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文档简介

1、PAGE PAGE 7 第十九章 玫瑰花环试验技术(Rosette formation test technique)一、E玫瑰花环试验基本原理 玫瑰花环试验是体外检测人和动物细胞免疫功能的一种方法。E玫瑰花环试验是T淋巴细胞计数的一种重要方法。由于人和动物的T淋巴细胞表面有红细胞受体,因此红细胞可以粘附到T淋巴细胞的周围而形成玫瑰花样的细胞团。在红细胞中,以绵羊红细胞最为常用。B淋巴细胞则没有红细胞受体,所以不能形成E玫瑰花环,以资鉴别。(二)材料与试剂1肝素抗凝剂2淋巴细胞分层液 配制方法见细胞分离技术。3无Ca2+、Mg2+ Hanks液 NaCl 4.00g NaHCO3 0.175g

2、 KCl 0.20g Na2HPO4.12H2O 0.076g KH2PO4 0.030g 葡萄糖 0.50g H2O加至 500.00ml用5.6NaHCO3调pH至7.2,11515min灭菌。4贮藏备用。45.6NaHCO3液 NaHCO3 5.60g H2O 100.00ml 11520min灭菌, 4贮藏备用。50.8戊二醛溶液 25戊二醛溶液 0.32ml Hanks液 9.68ml 用前配制。6Giemsaweight染色液 Giemsa粉 0.03g Weight粉 0.30g 甲醇 100.00ml先将染料一起放入研钵内,加入少量甲醇,研磨细,然后倒入瓶内,并用甲醇冲洗研钵内

3、染料,一起倒入玻瓶内,补足甲醇量,备用。(三)操作方法1取肝素抗凝血2ml,置37水浴自然沉淀30min40min,吸取全部血浆(约1ml)。2于血浆中加Hanks液数毫升,洗涤,1 500r/min离心5min10min,弃上清。重复洗涤4次,沉淀均匀即为淋巴细胞悬液。3采绵羊肝素抗凝血,加数倍Hanks液,洗涤3次,最后以Hanks配成10悬液,4保存。4取0.1ml淋巴细胞悬液,加10红血球悬液0.1ml,加小牛血清0.1ml。537水浴10min,低速离心(600r/min)5min。6吸弃多余的上清液后,放入4冰箱2h4h。7取出后,将沉淀轻轻摇起,加0.8戊二醛0.1ml,混匀后4

4、固定15min。8将干净的玻片用Hanks液沾湿,滴一小滴混悬液,让其自然散开即可。9自然干燥后,用姬姆萨瑞氏液(Giomsaweight)或苏木精伊红染色,水洗,干燥镜检。(四)结果判定凡一个淋巴细胞结合3个或3个以上的红细胞者为一个E玫瑰环。检查200个淋巴细胞,按下列公式计算其玫瑰花环形成率。附:某些动物的E玫瑰花环率马: 38.002.00(29.0151.35) (Tarr,M.J.) 31.209.64(18.7051.29) (成都军区军马防治检验所) 34.804.16(豚鼠RBC) (哈兽研) 30.704.30(绵羊RBC) (哈兽研) 36.5312.09(豚鼠RBC)

5、(东北农业大学)骡: 27.505.46(1438) (成都军区军马防治检验所)驴: 32.903.60 (哈兽研) 42.903.78 (哈兽研)牛: 37.704.20 (Binns) 45.304.00 (James)绵羊:30.702.00 (Binns)山羊:13.301.20 (Binns)猪: 54.101.90 (Binns) 40.8012.86 (东北农业大学)犬: 32.40 (Bowles)猫: 38.00 (Mackey)豚鼠:30.00 (Miguel)人: 34.806.00 (上海第一医学院)(五)注意事项1影响E玫瑰花环试验最主要的因素淋巴细胞和红细胞的新鲜程

6、度,被检血样必须新鲜,无菌,采血后要求在3h4h内进行检验,否则由于淋巴细胞的死亡,受体脱落,影响检查结果。红细胞用阿氏液保存最多不要超过3周,且不应溶血。2控制好反应温度、时间等条件对玫瑰花环形成率有较大影响。选37作用10min,低速离心5min,置4 2h4h,其结果稳定性较好,结合率较高。如在37作用时间较长,可见玫瑰花环发生变形,结合部位松弛、拉开,甚至解离。3指示红血球的动物种类也与玫瑰花环的形成率有关。如马淋巴细胞与豚鼠红细胞结合较好,而驴则与绵羊红血球结合较好。Melinda氏报道,人、马、牛、猪、狗、猫、鼠与豚鼠红细胞的结合率都高于绵羊红细胞的结合率。4加犊牛血清能增加玫瑰花

7、环形成细胞的稳定性,增强与指示红细胞结合的牢固性。5Hanks液的pH以7.27.4为宜。二、EAC玫瑰花环试验原理 B淋巴细胞表面具有补体C3受体,红细胞可与相应的抗体(溶血素)结合形成抗原抗体复合物(EA),以红细胞作为指示细胞,通过补体传统途径活化补体,而产生活化的C3,然后与活化的C3结合形成花环,以供计数B淋巴细胞。(二)材料与试剂1鸡红细胞悬液的制备 由于绵羊红细胞易与T淋巴细胞形成E玫瑰花环,易造成混淆,所以一般在检测B淋巴细胞时,采用鸡红细胞。从鸡翼下静脉采血,用肝素抗凝,以Hanks洗涤2次备用。2抗鸡红细胞抗体的制备 选2kg3kg的健康家兔,以Hanks液洗过的压积红细胞

8、进行免疫,每日背部皮下注射1次,共注5次,注射量为0.5 ml、1.0 ml、1.5 ml、2.0 ml、2.5ml。第六次改用静脉注射50压积红细胞悬液1ml,一日一次,连注3天。末次注射后7天试血,测定红细胞的凝集效价(见表18-1),以出现“+”的最高抗血清稀释度判定为血凝效价。效价达1:2 000以上者为合格。应用时采用凝集价的12(亚凝集价)作为抗血清的稀释度(即1:4 000)。表181溶血素的效价测定 试验组对照组管号12345678溶血素稀释倍数 1010210321033103410351031 红细胞量(ml)0.10.10.10.10.10.10.1溶血素量(ml)0.1

9、0.10.10.10.10.10.10.10.9盐水(ml)0.10.10.10.10.10.10.10.1混匀,37感作1h结果判定+ +-3补体 当日采集豚鼠混合血清,用Hanks液稀释成1100,置4保存备用。4无Ca2+、Mg2+ pH7.2的Hanks液5姬姆萨染液61戊二醛溶液(三)操作方法1分离淋巴细胞,制成约2.5106个ml悬液。2EAC悬液的制备 取4鸡红细胞2ml于试管中,加入14 000的鸡溶血素2ml,混匀,置37水浴15min,取出后离心,用Hanks液洗涤2次,再用Hanks液恢复至4红细胞2ml,加入等量的1100稀释补体,混匀,再放置37水浴15min取出,用

10、Hanks液洗涤2次,配成4EAC细胞悬液。3取淋巴细胞悬液0.2ml,加入4EAC细胞悬液0.2ml,混匀,室温或20作用30min。1 000r/min离心5min,吸弃过多的上清液,放入42h4h。4取出后,将沉淀轻轻摇起,加1戊二醛0.1ml,混匀后置4固定30min。5以悬液制片,自然干燥,滴加姬姆萨液染2min,加自来水继续放置15min,冲洗,将玻片置95酒精缸脱色15sec30sec(以脱成浅紫蓝色为度),再置盐酸液缸(按1HCl 1份与自来水2份)脱色(呈淡兰略带红色为度)10sec左右,取出冲洗,干后镜检。(四)结果判定 凡一个淋巴细胞结合3个以上鸡红细胞即为EAC花环形成

11、阳性细胞。共计数200个淋巴细胞,计算花环形成率。(五)注意事项1加入淋巴细胞与鸡红细胞的比例一般以140为宜(130150),淋巴细胞过少,花环形成率明显减少。2淋巴细胞、红细胞、补体均应新鲜,否则花环形成率明显下降。3据认为小鼠补体比豚鼠补体更为好,小鼠血清中胶固素活化因子(KAF)含量较多,可使大部分C3裂解而不易引起溶血。三、EA玫瑰花环试验原理 B淋巴细胞有表面Fc受体,以鸡红细胞作为指示细胞与相应的抗红细胞抗体形成EA,B淋巴细胞可以通过Fc受体与EA形成花环,以此计算B淋巴细胞的数目。Fc受体并非B细胞所特有,中性粒细胞、单核细胞及巨噬细胞表面均有这种受体,但这些细胞可以通过形态

12、学加以区别。此方法简单,目前较常采用,以检测B淋巴细胞的百分率。材料与试剂 基本同EAC花环试验,只是不需要补体。(三)操作方法1EA悬液的制备 取4鸡红细胞悬液2ml加入试管中,再加等量的14 000稀释的溶血素,混匀,置37水浴中15min,以Hanks液洗涤2次,再以2mlHanks液悬浮,为EA悬液。2取淋巴细胞悬液0.2ml于试管中,加入等量的4的EA悬液,混匀,室温或20作用30min,1000r/min离心5min,吸弃过多的上清液,置4 2h4h。3固定,制片,染色同EAC花环形成试验。4结果判定 同EAC花环形成试验。四、混合型玫瑰花环试验原理 混合型玫瑰花环的方法是既应用补

13、体致敏的家鸽红细胞(PRBC)作为B细胞的标志,同时又应用绵羊红细胞(SRBC)作为T细胞的标志,在一张玻片上同时检测T、B淋巴细胞。材料与试剂 参见E、EA、EAC玫瑰花环试验。(三)操作方法1鸽翼下静脉采血,加等量阿氏液,保存于4,可用2周。2以Hanks液洗鸽红细胞3次,最后配成5PRBC悬液。3取5PRBC0.25ml,加溶血素(兔抗鸽红细胞抗体,亚凝集单位)0.25ml于37水浴30min。以Hanks液洗涤3次,去上清,加Hanks液0.25ml。4加1SRBC悬液0.25ml,37水浴30min,Hanks液洗涤3次,去上清,加Hanks液0.25ml。5加淋巴细胞悬液0.25ml(21064106个细胞ml),37水浴5min,500r/min离心3min,置4过夜。6取出迅速加入20甲醛溶液0.5ml,混匀,于4放置10min后,加2滴2美兰液,轻轻摇匀。7取1滴于载玻片,加盖玻片,置镜下观察。计数300个淋巴细胞。(四)结果

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