药理学实验课教案

2013_2014学年第二期药理学实验课程实验课教案课程编号：课程类型：专业必修课总学时/周学时：108/6开课时间：2014年使用教材：药理学实验章蕴毅主编授课对象：专业：化学制药年级：10级专业：年级：专业：年级：授课教师：姓名：李连闯职称：讲师黑河学院教务处制教学日历（学期授课计划）周次起讫时间课次日/月节次学时内容纲要（章、节）12准备实验12准备实验12准备实验22实验一药理实验基本知识与技术22实验一药理实验基本知识与技术22实验一药理实验基本知识与技术32实验二小鼠的捉持和给药法32实验二小鼠的捉持和给药法32实验二小鼠的捉持和给药法42实验三家兔的捉持和给药法42实验三家兔的捉持和给药法42实验三家兔的捉持和给药法52实验四药物剂量对药物作用的影响52实验四药物剂量对药物作用的影响52实验四药物剂量对药物作用的影响62实验五给药途径对药物作用的影响62实验五给药途径对药物作用的影响62实验五给药途径对药物作用的影响72实验六肝脏功能对药物作用的影响72实验六肝脏功能对药物作用的影响72实验六肝脏功能对药物作用的影响82实验七肾功能损害对药物作用的影响82实验七肾功能损害对药物作用的影响教学日历（学期授课计划）周次起讫时间课次日/月节次学时内容纲要（章、节）82实验七肾功能损害对药物作用的影响92实验八传出神经药对兔瞳孔的影响92实验八传出神经药对兔瞳孔的影响92实验八传出神经药对兔瞳孔的影响102实验九普鲁卡因与丁卡因表面麻醉作用的比较102实验九普鲁卡因与丁卡因表面麻醉作用的比较102实验九普鲁卡因与丁卡因表面麻醉作用的比较112实验十地西泮的抗惊厥作用112实验十地西泮的抗惊厥作用112实验十地西泮的抗惊厥作用122实验十一镇痛药的镇痛作用122实验十一镇痛药的镇痛作用122实验十一镇痛药的镇痛作用13372实验十二尼可刹米对呼吸抑制的解救13382实验十二尼可刹米对呼吸抑制的解救13392实验十二尼可刹米对呼吸抑制的解救14402实验十三普萘洛尔抗氯化钡诱发心律失常的实验14412实验十三普萘洛尔抗氯化钡诱发心律失常的实验14422实验十三普萘洛尔抗氯化钡诱发心律失常的实验15432实验十四利尿药对家兔的利尿作用15442实验十四利尿药对家兔的利尿作用15452实验十四利尿药对家兔的利尿作用教学日历（学期授课计划）周次起讫时间课次日/月节次学时内容纲要（章、节）16462实验十五糖皮质激素的抗炎作用16472实验十五糖皮质激素的抗炎作用16482实验十五糖皮质激素的抗炎作用17492实验十六有机磷酸酯类中毒及其解救17502实验十六有机磷酸酯类中毒及其解救17512实验十六有机磷酸酯类中毒及其解救18522期末考试18532期末考试18542期末考试黑河学院实验课教案课程类型必修公共基础课（）；专业基础课（）；专业课（√）考核方式考试（）；考查（√）选修限选课（）；任选课（）实验名称实验一药理实验基本知识与技术实验目的实验动物的选择首先应根据实验目的选择动物，其次要考虑动物的来源、饲养及价格等方面条件。实验原理基本操作与仪器实验步骤1．实验动物的选择首先应根据实验目的选择动物，其次要考虑动物的来源、饲养及价格等方面条件。选择实验动物的原则应选择对被试药物或被研究物质最敏感的动物作为实验对象，实验动物选择不当，则可导致实验得出不正确的甚至相反的结论。（1）小白鼠（小鼠）医学实验中应用最广泛的动物。特别适用于需要大量动物的药物筛选、半数致死量测定、药效评价等实验研究。因其繁殖能力强，妊娠期仅为21天，因而也常用于避孕药的研究。由于其器官易发实质性损害，常用于致畸、致癌药及抗癌药的研究。(2)大白鼠（大鼠）大鼠也是较常用的实验动物，常用作亚急性和慢性毒性实验。大鼠的血压反应比家兔好，常用来直接描记血压，进行降压药的研究。它的垂体–肾上腺系统功能发达，可作为应激反应和肾上腺、垂体及卵巢等内分泌实验。大鼠无胆囊，因此用其做胆管插管收集胆汁，进行消化药的研究。大鼠的踝关节对炎症反应敏感，也用于治疗关节炎的药物研究。(3)青蛙和蟾蜍青蛙和蟾蜍为冷血动物又经济易得，其离体心脏对维持其正常功能的环境条件要求低，在人工营养液、室温及pH渗透压接近于它的血液等简单条件下，蛙心即能节律性搏动很久，因此常用于强心药物的实验；其腓肠肌和坐骨神经可用来观察药物对周围神经、横纹肌或神经肌肉接头的作用；其腹直肌还可用于检测胆碱能神经系统药物的作用。(4)豚鼠豚鼠对组织胺等收缩支气管物质很敏感，常用于平喘药及抗组织胺药的研究，以及进行过敏反应及免疫方面的实验。又因豚鼠对结核分支杆菌较敏感，也用于抗结核药物的实验研究。(5)家兔家兔驯服、易得，且便于静脉注射和灌胃给药，因而广泛用于科研教学中。常用于直接描记呼吸、血压的药效学实验及进行卵巢、胰岛等内分泌实验。家兔心脏在离体情况下可搏动很久，是观察药物对哺乳动物心脏直接作用较合适的模型。家兔体温变化敏感，常用于体温实验及热源检查。实验步骤(6)猫猫有较发达的神经系统和循环系统，常用于如去大脑僵直，姿势反射实验；观察刺激交感神经、瞬膜及虹膜的反应实验，阿托品解除毛果芸香碱作用等实验。猫血压比较稳定，观察血压反应时猫优于兔，因此猫也用于心血管及镇咳药物实验。(7)狗狗具有发达的血液循环和神经系统,以及基本与人相似的消化过程，因此是药理学研究中常用的动物之一。如药物对心血管作用的实验，由于动物较大，可用于同时记录多项指标，如血压、心电、心音、呼吸及血流量等的实验。也可用于条件反射、高血压等慢性实验,手术造胃瘘、肠瘘以观察药物对胃肠蠕动、分泌及消化过程的影响等实验。不同种类动物对药物的反应是有差异的，不同药效反应在一定程度上可阐明药物作用机制。因此，对一些药理作用尚不清楚的药物进行研究时，最好选用几种不同动物进行实验。宜从小动物开始，然后在如狗等大动物身上进行反复验证。2．实验设计原则（1）随机原则：按照机遇均等的原则进行分组。其目的是使一切干扰因素造成的实验误差减少，而不受实验者主观因素或其他偏性误差的影响。（2）对照原则：空白对照（指在不加任何处理的条件下进行观察对照）；阴性对照也称假处理对照（给予生理盐水或不含药物的溶媒）；阳性对照也称标准对照（指以已知经典药物在标准条件下与实验药进行对照）。（3）重复原则：能在类似的条件下，把实验结果重复出来，才能算是可靠的实验，重复实验除增加可靠性外，也可以了解实验变异情况。3．实验动物的编号图1-1编号标记图根据动物的种类、数量和观察时间长短等因素来选择适当的标记方法。实验用动物小鼠，一般用量大，每笼共养个体数多，外表无显著特征可供区别，故需采用特殊的标记方法加以区别。良好的标记方法应满足标号清晰、耐久、简便和实用的要求。常用的方法有染色法、耳缘剪孔法、烙印法和号牌法，前者最常用。图1-1编号标记图常的化学染色剂有：①3%～5%的苦味酸溶液（黄色）；②2%的硝酸银溶液（咖啡色）；③0.5%的中性红溶液（红色）。实验中应用最普遍的是苦味酸染色剂。标记方法见（图1-1）和表（1-）所示。此方法可标出1～999个编号，充分满足药理学教学与科研的需求。表1-1编号标记图示表编号1234567891326105947标记①②③①③②③①②③①②②③①②③⑩③①eq\o\ac(○,20)②③100100②③100⑩①100200②200300eq\o\ac(○,30)3004．实验动物的抓取与固定在进行动物实验时，首先要限制动物的活动，使其保持安静状态，以便操作和准确记录动物的反应情况，同时还要防止被动物咬伤，并保证动物不受伤害，这就需要掌握合理抓取、固定实验动物的方法。（1）小鼠小鼠性情比较温顺，但抓取时动作也要轻缓。通常是用右手抓住小鼠尾部，将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前爬行时，迅速用左手拇指和食指抓住其双耳及颈后部皮肤，将小鼠置于左手掌心中，再用无名指和小指将小鼠尾压在手掌上，即可将小鼠完全固定。可进行腹腔注射、采腹腔液、测肛温、作阴道涂片等操作。如（图1-2）所示。图1-2小鼠的抓取与固定（2）大鼠大鼠的牙齿尖锐，在惊恐或激怒时易将操作者手指咬伤，故在抓取时要小心。抓鼠时右手轻轻抓住大鼠尾巴向后拉，左手抓紧大鼠头、颈部皮肤，并将鼠固定在左手中，此时即可进行腹腔注射、灌胃等操作。如要做尾静脉取血、注射等操作，可将鼠置于使用台上，用玻璃钟罩扣住或置于大鼠固定盒内，露出尾部，其他较精细的操作应在乙醚麻醉下进行。（3）豚鼠豚鼠胆小易惊，抓取时必须稳、准、迅速，先用手掌迅速扣住豚鼠背部，抓住豚鼠肩胛上方，以拇指和食指扣住颈部，其余手指握持躯干，即可轻轻提起、固定。对于体重大的豚鼠，要用另一只手托住臂部。（4）家兔家兔比较驯服，但前爪较尖，应避免抓伤。家兔的抓取方法一般是用一只手抓住兔的颈部将兔提起，然后用另一只手托其臀部。不能采取单手抓提家兔双耳、腰部或四肢的方法，以免造成双耳、颈椎或双肾的损伤。图1-3兔的台式固定法家兔固定方法可根据实验需要而定。如作兔耳静脉取血、注射或观察兔耳血管变化，可采用盒式固定方法。如要作测量血压、呼吸等实验或手术时，需将兔固定在手术固定台上，并将兔置于仰卧位（图1-3），其头部要固定。图1-3兔的台式固定法5．实验动物的给药途径和方法实验动物的给药途径和方法有很多种，可根据实验目的、动物种类和药物剂型、剂量确定。（1）皮下注射法皮下注射时用左手拇指和食指轻轻提起动物皮肤，右手持注射器将针头斜刺入皮下，刺穿皮肤后，平行再进入针头的2/3，若见针头能在皮下摆动则证明针头已到达给药位置，可推注药液。皮下注射进针的部位，一般在小鼠腹部两侧，大鼠为背部或下腹部两侧，豚鼠在后大腿内侧或下腹部，家兔为背部或耳根部，狗、猫则常选用大腿外侧。（2）肌肉注射法肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位。注射时要将针头垂直快速刺入肌肉，回抽针芯，如无回血即可注射。家兔、狗、猫等大动物多在臂部注射，每只每次射量不超过2ml；大鼠和小鼠因体型小，肌肉少，很少使用肌肉注射，如必须肌注常在股部注射。 （3）腹腔注射法大、小鼠的腹腔注射方法为：用左手固定动物，右手持注射器，在下腹部左侧或右侧沿小鼠纵轴与横轴成45°角刺入皮下，沿皮下向心方向推进，同时保持针头与腹平面和垂直面亦呈45°角穿过腹肌刺入腹腔，约刺入针头的2/3深度，此时有落空感，回抽无肠液、尿液或血液后，缓缓推入药液（图1-4）。家兔、狗、猫等动物进行腹腔注射时应先行固定。一般小鼠每只每次注射量不超过0.5cm，大鼠不超过2ml（4）静脉注射法大鼠和小鼠的静脉注射常采用尾静脉注射。鼠尾静脉共有3根，左右两侧和背部正中各1根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。先将鼠装入固定器内，露出尾巴，用45～50℃温水浸泡或用75%酒精擦拭使血管扩张，并可使表皮角质软化。握住鼠尾两则，使静脉充盈，注射器针头尽量与鼠尾角度平行，以利于进针。先缓缓推入少许药液，如针头已进入静脉推药时感觉无阻力；如阻力较大，并出现白色皮丘，则表示未刺入血管，应换部位重新注射。如需反复注射，应尽量从鼠尾的末端开始，如（图1-5）所示。图1-5小鼠尾静脉注射法图1-5小鼠尾静脉注射法图1-4小鼠的腹腔注射法图1-4小鼠的腹腔注射法图1-6小鼠灌胃法（5）经口给药法图1-6小鼠灌胃法①口服法将药物放入饲料或溶于饮水中让动物自动摄取的给药法。此法简单方便，但是剂量不易掌握。②灌胃法灌胃器由注射器和特殊的灌胃针头构成。小鼠的灌胃针头长约4～5cm，直径约1mm，灌胃针头的尖端焊有一中空小圆金属球。此金属球的作用是防止针头刺伤气管或损伤消化道。金属球端针管可弯成向内灌胃时用左手固定动物，使其腹部朝内，头部向上并稍倾斜。右手持灌胃器，将灌胃针头弯曲向内，从一侧口角插入口腔，轻压鼠的头部向后倾斜，使口腔与食道成一直线，然后可将药液注入。③家兔灌胃法：家兔液体药物灌胃法是将兔的躯体夹于两腿之间，左手紧握双耳，固实其头部，右手抓住前肢。另一人将兔用开口器插入兔口中，将舌头压在开口器下面，把开口器固定。将合适的胃管（可用10号导尿管代替），经开口器中央小孔慢慢沿上颚壁插入食道约8～10cm。为避免误入气管，可将胃管的外口端放入清水杯中，若有气泡从中逸出，则证明在气管内，应拔出重新插入，若无气泡则用注射器将药液灌入，然后再注入少量清水，将胃管内药液冲入胃内。灌胃完毕后，拔出导尿管，之后拿出开口器。④咽淋巴囊内给药：蛙及蟾蜍常通过各淋巴囊途径给药如（图1-7）。图1图1–7蛙及蟾蜍的皮下淋巴囊实验中注意事项注：本堂课实验内容亦可观察实验录相《动物的捉拿与给药方法》。实验后记教研室主任审查意见注：实训、社会调查、专题讨论、案例分析等其他实践课的教案内容可参照实验课教案内容编写。黑河学院实验课教案课程类型必修公共基础课（）；专业基础课（）；专业课（√）考核方式考试（）；考查（√）选修限选课（）；任选课（）实验名称实验二小鼠的捉持和给药法实验目的学习小鼠的捉持和各种给药法。实验原理基本操作与仪器小鼠3-4只；鼠笼、天平、注射器、针头、灌胃针头、小鼠尾静脉注射用固定筒、生理盐水。实验步骤１.捉持法以右手提鼠尾，将小鼠放于鼠笼或其它粗糙面上，将鼠尾向后轻拉，使小鼠固定在粗糙面上，以左手的拇指及屈成“V”状的食指捏其双耳及头颈部皮肤，无名指、小指和掌心夹其背部皮肤和尾部，这样便可将小鼠完全固定，并可保持头颈部平直。2.灌胃法以左手捉持小鼠，使其头部朝上，颈部拉直。右手持配有灌胃针头（以16号输血针头磨去针尖后制成）的注射器，自口角插入口腔，再从舌面紧沿上腭进入食道。如手法正确，不难成功。若遇阻力，应退出后再插，不能用力强插，以免刺破食道或误入气管，使动物致死。灌胃的药液量一般为0.1-0.3ml/10g。试以生理盐水作灌胃练习。3.皮下注射可由两人合作。一人左手抓住小鼠头部皮肤，右手拉住鼠尾。另一人左手捏起背部皮肤，右手持注射器（5号或6号针头），将针头刺入背部皮下。如由一人操作，可按前法捉持小鼠，右手持注射器，针尖从右侧肋缘上穿入皮下，向前推至右前肢腋下部位，将药液推入即可。小鼠皮下注射的药液量一般为0.05-0.2ml/10g。试以生理盐水进行练习。4．肌内注射可由两人合作。一人左手抓住小鼠头部皮肤，右手拉住鼠尾。另一人持注射器（4号或5号针头），将针头刺入后肢外侧部肌肉。如一人单独操作，以左手拇指和食指抓住小鼠头部皮肤，小指、无名指和掌部夹住鼠尾及一侧后肢，右手持注射器刺入后肢肌肉给药。注射器每腿不宜超过0.1ml。试以生理盐水进行练习。5．腹腔注射以左手抓住小鼠，使腹部在上面，头部下倾，右手持注射器（5号或6号针头），取30度角将针头从一侧下腹部向头端刺入腹腔。进针部位不宜太高，刺入不能太深，以免伤及内脏。注射量一般为0.1-0.2ml/10g。试以生理盐水进行练习。6．尾静脉注射将小鼠置特制的固定筒内（或倒置的大漏斗、乳钵下），使鼠尾露出在外。用酒精（或二甲苯）棉球涂擦尾部，或将鼠尾在50℃热水中浸泡半分钟，使血管扩张。用左手拉住尾尖，从左右两侧尾静脉中，选择一条扩张最明显的尾静脉，右手持注射器（实验步骤号针头），将针头刺入血管，推入药液。如推注时有阻力，且局部肿胀变白，表明针头没有刺入血管，应拨出后重新穿刺。穿刺血管时宜从鼠尾末端开始，以便失败后可在第一次穿刺点的近心端重新进行。小鼠尾静脉注射的药液量一般为0.1∽0.2ml/10g。试以生理盐水作尾静脉注射练习。实验中注意事项实验后记教研室主任审查意见注：实训、社会调查、专题讨论、案例分析等其他实践课的教案内容可参照实验课教案内容编写。黑河学院实验课教案课程类型必修公共基础课（）；专业基础课（）；专业课（√）考核方式考试（）；考查（√）选修限选课（）；任选课（）实验名称实验三家兔的捉持和给药法实验目的学习家兔的捉持和各种给药法。实验原理基本操作与仪器家兔1-2只；兔固定箱、兔开口器、磅称、导尿管、注射器、生理盐水实验步骤1．捉持法用一手抓住家兔颈背部皮肤，将兔提起，另一手托其臀部，使兔呈坐位姿势。2．灌胃需由两人合作进行。一人取坐位，用两腿夹持兔身，左手握家兔双耳，右手抓住两前肢，另一人将木制开口器横插家兔口内，压住舌头，并固定之。取8号导尿管，从开口器中部小孔插入食道，深约15-18cm。插管时易误入气管。区别方法主要在于谨慎观察插管后动物的反应。插入气管时将引起剧烈挣扎和呼吸困难。也可将导尿管的外端浸入水中，如有气泡吹出，表示已误入气管内，此时应拨出重插。在判明导尿管确定插在食道内以后，取注射器接在导尿管上，将药液推入。再推注少量空气，使导尿管中不致有药液残留。然后抽出导尿管，取出开口器。如用兔固定箱，亦可一人操作。左手将开口器固定于兔口内，右手将导尿管插入食道。家兔灌胃给药时的药液容量一般为5-20ml/kg3．皮下、肌内及腹腔注射给药方法基本上同小白鼠，唯针头可稍大（6号或7号），给药量可稍多（皮下与肌内0.5-1.0ml/kg，腹腔1.0-5.0ml/kg）。4．静脉注射将家兔置固定箱内，拨去耳壳外缘的毛，选择一条比较明显的耳缘静脉，用酒精棉球涂擦皮肤，使血管显露。用左手拇指和中指捏住兔的耳尖，以食指垫在兔耳拟进针部位的下面，右手持注射器（6号），从近耳尖处将针头刺入血管。如见到针头确在血管内，即以左手将针头固定在兔耳上，将药液推入。推注时如有阻力，局部出现肿胀，表明针头不在血管内，应立即拨针重新穿刺。家兔的静脉注射量，一般药液为0.2-2.0ml/kg，等渗药液可达10ml/kg。试以生理盐水进行练习。实验步骤附：其他动物的给药法大鼠的捉持和给药法捉持法将大鼠放于粗糙面上，用右手拉其尾部，左手戴保护手套，以拇指和食指捉其头部，其余三指夹住背部腹部。对于身体特大或凶狠易咬人的大鼠，可先以布巾包裹全身（露出口、鼻），然后进行操作。给药法大鼠的各种给药法基本上同小鼠，唯所用的给药工具可稍大，给药量也可稍多。豚鼠的捉持和给药法捉持法豚鼠性温和，一般不咬人，用手握住身体即可。皮下、肌内及腹腔注射方法基本上同小鼠，给药量可稍多。静脉注射可选用后脚掌外侧的静脉或外颈静脉进行注射。作后脚掌外侧静脉注射时，可由一人捉豚鼠并固定一条后腿，另一人剪去注射部位的毛，用酒精棉球涂擦后脚掌外侧的皮肤使血管显露，再将连在注射器上的小儿头皮静脉输液针头刺入血管。作外颈静脉注射时需先剪去一点皮肤，使血管暴露，然后将连在注射器上的小儿头皮静脉输液针头刺入。豚鼠的静脉管壁脆弱易破，操作时需特别小心。实验中注意事项实验后记教研室主任审查意见注：实训、社会调查、专题讨论、案例分析等其他实践课的教案内容可参照实验课教案内容编写。黑河学院实验课教案课程类型必修公共基础课（）；专业基础课（）；专业课（√）考核方式考试（）；考查（√）选修限选课（）；任选课（）实验名称实验四药物剂量对药物作用的影响实目验的观察不同剂量的药物对药物作用的影响，巩固小白鼠捉持法和腹腔注射法。实验原理药物剂量的大小决定血药浓度的高低，血药浓度又决定药理效应，因此药物剂量决定药理用强弱。基与本仪操器作1.器材：普通天平一台，1ml注射器3支、钟罩3个。2.药品：2%水合氯醛溶液、染料3.动物：小白鼠实验步骤取小白鼠3只，称其体重并作好标记，观察其正常活动后，分别腹腔注射2%水合氯醛0.05ml/10g；0.15ml/10g；0.5ml/10g；给药后分别放入钟罩，观察比较小白鼠活动情况，记录作用发生的时间和症状，并比较三鼠有何不同。【实验结果】鼠号体重（g）药物及用量用药后反应情况甲乙丙实验中注意事项本实验也可用0.2%苯甲酸钠咖啡因溶液0.2ml/10g；0.5%溶液0.2ml/10g；2%溶液0.2ml/10g分别腹腔注射后，观察其活动变化。【讨论】1.三鼠的反应有何不同？为什么？2.药物的治疗量、极量、安全范围有何意义？实验后记教研室主任审查意见注：实训、社会调查、专题讨论、案例分析等其他实践课的教案内容可参照实验课教案内容编写。黑河学院实验课教案课程类型必修公共基础课（）；专业基础课（）；专业课（√）考核方式考试（）；考查（√）选修限选课（）；任选课（）实验名称实验五给药途径对药物作用的影响实目验的观察经不同途径给药，对药物的反应有何不同，进一步理解影响药物作用的因素。实验原理1.影响药物效应的因素有两大方面：药物方面的因素和机体方面的因素。药物方面的因素包括药物剂型、给药途径、药物间的相互作用对药效的影响。这一实验就是研究不同途径给药时对药物作用的影响。2.给药途径：①口服：最常用的给药方式。但是要经过肝脏的首关消除，就是从胃肠道吸收进入门静脉系统的药物首先通过肝脏代谢，进而进入血液循环。如果药物的首关消除越高，进入全身血循环的药量就越少，生物利用度就越低。②吸入：肺泡表面积很大，血流量丰富，气态药物或气化的药物通过吸入给药时刻被迅速吸收。③注射：包括静脉注射、静脉点滴（没有吸收的过程，药效发挥最快）、肌肉注射、皮下注射等。④经皮肤给药：脂溶性高的药物，如硝酸甘油。3.硫酸镁：口服，导泻和利胆的作用；注射则产生抗惊厥、降压和肌肉松弛的作用。基本操作与仪器1.药品：10%硫酸镁溶液、生理盐水2.器材：1ml注射器、小鼠灌胃器、鼠罩、天平3.动物：小白鼠实验步骤1.每组抓取2只正常小白鼠，称重（g），标记（甲、乙）。2.甲鼠：肌肉注射10%硫酸镁溶液（0.1ml/10g），观察。乙鼠：灌胃10%硫酸镁溶液（0.1ml/10g）加0.4ml生理盐水，观察。实验中注意事项1.小鼠灌胃时，应避免将灌胃器插入气管。2.注射硫酸镁的速度要缓慢。实验后记教研室主任审查意见注：实训、社会调查、专题讨论、案例分析等其他实践课的教案内容可参照实验课教案内容编写。黑河学院实验课教案课程类型必修公共基础课（）；专业基础课（）；专业课（√）考核方式考试（）；考查（√）选修限选课（）；任选课（）实验名称实验六肝脏功能对药物作用的影响实验目的观察肝功能损害对药物作用的影响，进一步理解影响药物作用的因素。实验原理1.影响药物效应的因素有两大方面：药物方面的因素和机体方面的因素。机体方面的因素包括年龄、性别、遗传因素、特异质反应、疾病状态、心理因素等对药效的影响。这一实验主要研究疾病状态中的肝功能损害对药物作用的影响。2.肝损害动物模型：实验前24h皮下注射10%四氯化碳（0.2ml/10g）3.硫喷妥钠：巴比妥类镇静催眠药。小剂量抗焦虑、镇静作用，随着剂量的增大，依次出现催眠、抗惊厥和抗癫痫、麻醉的作用。基本操作与仪器1.药品：0.4%硫喷妥钠溶液、10%四氯化碳油剂2.器材：1ml注射器、小鼠灌胃器、鼠罩、天平、手术镊、手术剪3.动物：小白鼠实验步骤1.每组抓2只小白鼠（1只正常，1只肝脏损害），称重，标记（甲、乙）。2.分别腹腔注射0.4%硫喷妥钠溶液（0.1ml/10g），观察两组小鼠的翻正反射，记录时间。3.处死并解剖小白鼠，观察肝脏差别（颜色、质地、边缘、表面光滑度）。记录结果组别体重（g）药量（ml）注射时间产生作用时间醒转时间维持时间正常组肝损害组实验中注意事项1.观察翻正反射时要保持实验室安静，以第一次翻转的时间作为醒转时间。2.若室温低于20℃【讨论】该实验说明肝功能损害与药物作用有何关系？肝功能受损的病人临床上用药护理应注意什么问题？实验后记教研室主任审查意见注：实训、社会调查、专题讨论、案例分析等其他实践课的教案内容可参照实验课教案内容编写。黑河学院实验课教案课程类型必修公共基础课（）；专业基础课（）；专业课（√）考核方式考试（）；考查（√）选修限选课（）；任选课（）实验名称实验七肾功能损害对药物作用的影响实验目的观察肾功能损害对药物作用的影响。实验原理基本操作与仪器1．药品：2.5％链霉素溶液，0.1％氯化高汞溶液。2．器材：天平、1ml注射器、鼠笼或小白鼠观察盒。3．动物：小白鼠4只，体重18-22g，雌雄各半。实验步骤取正常小白鼠和肾功能已被破坏的小白鼠（实验前24h腹腔注射0.1％氯化高汞0.1ml/10g,）各２只，称体重，分别由腹腔注射2.5％链霉素溶液0.15ml/10g（375mg／kg），观察小白鼠的活动情况（肌张力、活动情况、呼吸）。比较两组小白鼠的变化有何差别。【实验结果】组别动物编号2.5％链霉素溶液0.15ml/10g给药后反应正常组12肾损害组12实验中注意事项1.本实验幼龄动物实验效果较好。2.氯化高汞肾毒性大，汞与含巯基的酶结合破坏肾脏，导致肾功能障碍，使链霉素排泄减慢而引起中毒，出现肌松弛、肌麻痹、甚至呼吸抑制而死亡，实验时亦可能正常小白鼠也出现链霉素中毒，注意两组小鼠中毒程度的区别。【讨论】1.注射链霉素后两组小白鼠的反应为什么不同？2.肾功能损害的病人临床上用药护理应注意什么问题？实验后记教研室主任审查意见注：实训、社会调查、专题讨论、案例分析等其他实践课的教案内容可参照实验课教案内容编写。黑河学院实验课教案课程类型必修公共基础课（）；专业基础课（）；专业课（√）考核方式考试（）；考查（√）选修限选课（）；任选课（）实验名称实验八传出神经药对兔瞳孔的影响实验目的1．观察毛果芸香碱、阿托品、毒扁豆碱、新福林对瞳孔的影响，分析其作用机制，并联系临床应用。2．学会家兔滴眼及量瞳的操作方法。实验原理基本操作与仪器1.药品1%硝酸毛果芸香碱、1%硫酸阿托品、0.5%水杨酸毒扁豆碱、1%新福林。2.器材学生尺、手电3.动物家兔2只。实验步骤１．取家兔2只，标记后分别放入固定器内，剪去眼睫毛，在自然光下测量瞳孔大小并记录。然后按下列顺序给药，每只眼滴3滴。兔号左眼右眼甲1%硫酸阿托品1%硝酸毛果芸香碱乙0.5%水杨酸毒扁豆碱1%新福林滴眼时将下眼睑拉成杯状，并用手指按住鼻泪管，使其在眼睑中保留１分钟。２．１5分钟后，在同样光线下，再分别测量瞳孔大小。【实验结果】兔号眼睛药物瞳孔大小（ｍｍ）给药前给药后甲左阿托品右毛果芸香碱乙左毒扁豆碱右新福林实验中注意事项１．测量瞳孔时不要刺激角膜，测量前后光线要一致以免影响瞳孔大小。２．实验动物应为一周内没有用过眼药者。３．滴眼时必须压住鼻泪管，以防药液吸收。【讨论】１．根据实验结果分析阿托品、毛果芸香碱、毒扁豆碱、新福林对瞳孔的作用，并分析起作用机制。２．通过本实验说明这类药物的临床意义以及在应用时应注意什麽。实验后记教研室主任审查意见黑河学院实验课教案课程类型必修公共基础课（）；专业基础课（）；专业课（√）考核方式考试（）；考查（√）选修限选课（）；任选课（）实验名称实验九普鲁卡因与丁卡因表面麻醉作用的比较实验目的观察局麻药表面麻醉作用的强度。实验原理基本操作与仪器1．药品：1％丁卡因溶液、1%普鲁卡因溶液。2．器材：角膜刺激器、滴管2支、兔笼、组织剪。3．动物：家兔1只，体重1-2kg。实验步骤取无眼疾家兔1只，由助手固定，剪去动物的双眼睫毛；用角膜刺激器或兔须轻触角膜之上、中、下、左、右5点，观察并记录正常眨眼反射；然后用拇指和食指将左侧下眼睑拉成环状，滴入1%丁卡因溶液3滴，使其存留1min,然后任其流溢；另于右眼内滴入1%普鲁卡因溶液3滴；观察不同时间的眨眼反射情况【实验结果】动物眼药物给药前眨眼反射给药后眨眼反射（min）51015202530家兔左侧丁卡因右侧普鲁卡因实验中注意事项本实验记录方法为：测试次数为分母，眨眼次数为分子，若测试5次，若有二次眨眼，记录为2/5。滴药时用中指压住鼻泪管，以防药液流入鼻泪管被吸收而发生中毒。刺激角膜的兔须前后应用同一根，刺激强度应尽量一致。刺激角膜时不可触及眼睑，以免影响实验效果。【讨论】联系实验结果，比较普鲁卡因和丁卡因的局部麻醉作用特点及临床用途。实验后记教研室主任审查意见注：实训、社会调查、专题讨论、案例分析等其他实践课的教案内容可参照实验课教案内容编写。黑河学院实验课教案课程类型必修公共基础课（）；专业基础课（）；专业课（√）考核方式考试（）；考查（√）选修限选课（）；任选课（）实验名称实验十地西泮的抗惊厥作用实验目的观察局麻药吸收中毒反应和地西泮的抗惊厥作用。实验原理基本操作与仪器1．药品：5％盐酸普鲁卡因溶液，0.5％地西泮溶液。2．器材：兔固定箱、台式磅秤、5ml注射器、针头6号。3．动物：家兔1只，体重2kg~3kg。实验步骤取家兔1只，称重，拔去耳缘静脉注射部位被毛，剪去一侧臀部被毛，观察正常活动情况。然后在臀部肌注5％盐酸普鲁卡因溶液（2ml/kg），观察动物的活动、姿势、肌张力及呼吸等变化。当家兔出现典型的局麻药中毒惊厥后，由耳缘静脉缓慢推注0.5％地西泮溶液（0.5~1ml/kg）直到肌肉松弛为止。【实验结果】普鲁卡因注射地西泮后给药前给药后家兔反应实验中注意事项局部麻醉药过量可吸收入血，进入中枢后使边缘系统兴奋灶扩散，以至出现兴奋、抽搐和惊厥。地西泮作用于边缘系统，加强了GABA能神经元的抑制作用，可有效对抗局麻药中毒性惊厥。1．本实验采用普鲁卡因静脉注射，剂量要准确，量少达不到引起动物惊厥的目的，量大易动物呼吸抑制而导致死亡。2．普鲁卡因过量中毒表现为强直性惊厥，此时应立即静脉注射地西泮。3．静脉注射地西泮时应缓慢推注，并且要密切观察动物的呼吸情况。【讨论】1.地西泮的作用特点、作用机制和用途有哪些？实验后记教研室主任审查意见注：实训、社会调查、专题讨论、案例分析等其他实践课的教案内容可参照实验课教案内容编写。黑河学院实验课教案课程类型必修公共基础课（）；专业基础课（）；专业课（√）考核方式考试（）；考查（√）选修限选课（）；任选课（）实验名称实验十一镇痛药的镇痛作用实验目的观察镇痛药哌替啶、罗通定的镇痛作用。实验原理1.热板刺激法：小鼠受到热刺激产生痛感而表现为舔后足，然后用镇痛药对抗。2.电刺激法：小鼠受到电刺激产生痛感而发出嘶叫声，然后用镇痛药对抗。3.化学刺激法（扭体法）：应用一些化学刺激物注入小鼠腹腔内，引起深部大面积而较持久的疼痛刺激，致使小鼠产生“扭体反应”。扭体反应：腹部内凹，躯干和后肢伸长，臀部高起。基本操作与仪器1.药品：0.2%盐酸哌替啶溶液、0.2%罗通定溶液、生理盐水、0.6%醋酸溶液。2.器材：天平1台、1ml注射器2支、针头若干、大烧杯3个、秒表1块。3.动物：小白鼠6只。实验步骤取小白鼠6只，分为3组，每组2只，标记，称重，放入大烧杯中，观察其正常活动情况。1组腹腔注射0.2%盐酸哌替啶溶液0.1ml/10g，2组腹腔注射0.2%罗通定溶液0.1ml/10g作为实验组，3组腹腔注射生理盐水0.1ml/10g作为对照组，并用秒表记时。30分钟后，3组每只小鼠均腹腔注射0.6%醋酸溶液0.2ml/10g，并观察其活动情况。记录给药后15分钟内小鼠出现扭体反应的动物数。把记录结果填入下表，并计算各药的镇痛百分率。【实验结果】药物扭体反应组别鼠数镇痛百分率（%）镇痛药物致痛药物有反应鼠数无反应鼠数1组2哌替啶醋酸2组2罗通定醋酸3组2生理盐水实验中注意事项1.小白鼠扭体反应的表现为伸展后肢、腹部收缩内凹、躯体扭曲、臀部抬高及蠕行等，出现任何一项均为阳性。2.0.6%醋酸溶液宜临时配制，否则效果不佳。3.无0.6%醋酸溶液时，也可用0.05%酒石酸锑钾溶液代替，但应新鲜配制。4.当实验组比对照组扭体反应发生率减少50%以上时，才能认为有镇痛作用。5.实验结束后，以班为单位，综合实验结果，计算各药的镇痛百分率。实验组无扭体反应动物数－对照组无扭体反应动物数药物镇痛百分率=×100%对照组扭体反应动物数【讨论】根据实验结果讨论哌替啶和罗通定的镇痛强度及临床应用。实验后记教研室主任审查意见注：实训、社会调查、专题讨论、案例分析等其他实践课的教案内容可参照实验课教案内容编写。黑河学院实验课教案课程类型必修公共基础课（）；专业基础课（）；专业课（√）考核方式考试（）；考查（√）选修限选课（）；任选课（）实验名称实验十二尼可刹米对呼吸抑制的解救实验目的观察中枢兴奋药对中枢抑制药所致呼吸抑制的解救，并联系其临床应用。实验原理基本操作与仪器药品：1％盐酸吗啡溶液、5％尼可刹米溶液、液体石蜡、1％丁卡因溶液。器材：磅秤1台、兔固定器1个、记纹鼓1台、铁支架1台、玛利氏气鼓1个、双凹夹1个、导尿管1根、橡皮管1根、胶布、注射器(Stol、10mi)各1支、针头(5#)2个、酒精棉球，3.动物：家兔1只。实验步骤1．取家兔1只，称重，放入固定器内。2．用1％丁卡因涂擦鼻粘膜，5—10分钟后将涂有液体石蜡的导尿管轻轻插入家兔一侧鼻孔内，待玛利气鼓上的描笔明显摆动时，用胶布固定导尿管。3．打开记纹鼓记录一段正常呼吸曲线。4．由耳静脉较快地注入1％盐酸吗啡溶液1—2ml／kg，观察并记录呼吸频率及幅度的变化。5．待呼吸频率明显减慢，幅度显著降低时，立即由耳静脉缓慢注射5％尼可刹米1～2m1，观察并记录呼吸有何变化。6．待呼吸抑制缓解后，快速耳静脉注射尼可刹米0.5ml左右，观察惊厥是否出现。【实验结果】动物体重（kg）记录情况正常状态给吗啡后给尼克刹米后家兔呼吸曲线呼吸频率（次/分）实验中注意事项1．尼可刹米应事先准备好，如果呼吸过度抑制，解救不及时易致动物死亡。注射尼克刹米速度不宜过快，否则容易引起惊厥2．家兔应固定好，以免挣扎影响呼吸曲线描记。【讨论】1．叙述中枢兴奋药共同作用特点？2．试述中枢兴奋药的临床应用和用药护理？3．吗啡中毒的主要症状有哪些？如何诊治？实验后记教研室主任审查意见注：实训、社会调查、专题讨论、案例分析等其他实践课的教案内容可参照实验课教案内容编写。黑河学院实验课教案课程类型必修公共基础课（）；专业基础课（）；专业课（√）考核方式考试（）；考查（√）选修限选课（）；任选课（）实验名称实验十三普萘洛尔抗氯化钡诱发心律失常的实验实验目的学习用氯化钡诱发大鼠心律失常法筛选抗心律失常药的方法，观察普萘洛尔的抗心律失常作用。实验原理基本操作与仪器药品：0.4%氯化钡，0.025%普萘洛尔，10%水合氯醛，生理盐水。2．器材：大鼠手术台，手术剪，手术镊，眼科剪，眼科镊，注射器（1ml、2ml），头皮静脉注射针头，台式磅秤，棉球，秒表，纱带，心电针式电极，BL-420生物机能实验系统。动物：大鼠1只实验步骤1．实验动物麻醉：取大鼠1只，称重，腹腔注射10%水合氯醛0.3ml/100g麻醉，仰卧固定在大白鼠板上。2．股静脉给药准备：于大鼠一侧大腿内侧股动脉搏动处剪开皮肤约2cm，暴露股静脉，插入与注射器相连的头皮静脉注射针头，以备给药。3．观察、描记正常心电图：将心电针形电极按要求插入四肢皮下（红色电极－右前肢、黄色电极－左前肢，绿色电极－左后肢，黑色电极－右后肢），心电引导电极输入端插头与BL-420系统前面板ECG全导联心电接口连接好。调整有关实验参数，观察、描记大鼠正常心电图。4．氯化钡诱发心律失常：描记一段正常心电图后，股静脉缓慢注射0.4%氯化钡溶液0.1ml/100g（4mg/kg），立即描记心电图20s，以后每隔1min再描记心电图一小段，并通过显示屏对心电图连续观察、监视，直至恢复窦性节律（约20min）。记录心律失常的持续时间。心律失常恢复正常后，再过10min由股静脉注射0.025%普萘洛尔0.1ml/100g（0.25mg/Kg），5min后再注射同前剂量的氯化钡，并用同样方法记录心电图及心律失常的持续时间。统计全班结果，比较前后两次氯化钡引起心律失常的持续时间并作“t”检验。【实验结果】心律失常持续时间（min）1组2组3组4组…平均第一次氯化钡第二次氯化钡实验中注意事项1．本实验中的麻醉药水合氯醛不能以戊巴比妥钠等替代，否则不易引起较恒定的心律失常。2．本实验中大白鼠静脉给药也可通过其舌下静脉注射。3．本实验也可以在家兔身上进行，给药剂量分别为：20%乌拉坦溶液3ml/kg麻醉，0.4%氯化钡溶液1ml/kg，0.025%普萘洛尔1ml/kg，均从耳缘静脉注射。4．比较大白鼠前后所用药物，出现的心电图变化以及心律失常的持续时间。剪贴或复制有代表性的心电图段落。初步评价普萘洛尔对氯化钡诱发心律失常的拮抗作用。【讨论】氯化钡引起心律失常的原因是什么？普萘洛尔抗心律失常的机制是什么？临床上主要用于何种心律失常？实验后记教研室主任审查意见注：实训、社会调查、专题讨论、案例分析等其他实践课的教案内容可参照实验课教案内容编写。黑河学院实验课教案课程类型必修公共基础课（）；专业基础课（）；专业课（√）考核方式考试（）；考查（√）选修限选课（）；任选课（）实验名称实验十四利尿药对家兔的利尿作用实验目的观察呋塞米的利尿作用并联系其临床应用。实验原理基本操作与仪器1．药品：0.9%NaCl，1%呋塞米，20%氨基甲酸乙酯。2．器材：兔手术台，手术器械一套，肠钳一把，覃形膀胱导管一根，烧杯，头皮静脉针及静脉输注装置，纱布，丝线，棉绳若干。3．动物：家兔1只。实验步骤取家兔1只，称重，20%氨基甲酸乙酯5ml/kg耳静脉麻醉。仰位将兔固定于手术台上，耳静脉恒速（20-30滴/分）输注生理盐水。下腹部剪毛，在耻骨联合上缘切开皮肤约4-5cm，沿腹白线剪开腹壁及腹膜，暴露膀胱，在膀胱腹侧面，避开血管作1厘米长切口，插入覃形膀胱导管（在插管前该导管要充满液体，再以肠钳夹住末端橡皮管），然后结扎固定